| Processo: | 21/09624-3 |
| Modalidade de apoio: | Auxílio à Pesquisa - Regular |
| Data de Início da vigência: | 01 de março de 2022 |
| Data de Término da vigência: | 31 de agosto de 2024 |
| Área do conhecimento: | Ciências da Saúde - Odontologia - Materiais Odontológicos |
| Pesquisador responsável: | Janaina Habib Jorge |
| Beneficiário: | Janaina Habib Jorge |
| Instituição Sede: | Faculdade de Odontologia (FOAr). Universidade Estadual Paulista (UNESP). Campus de Araraquara. Araraquara , SP, Brasil |
| Município da Instituição Sede: | Araraquara |
| Assunto(s): | Reabilitação bucal Polimento dentário Resinas acrílicas Impressão tridimensional Desinfecção Biofilmes |
| Palavra(s)-Chave do Pesquisador: | biofilme | desinfecção | impressão 3D | Resina acrílica | reabilitação oral |
Resumo
Nos últimos anos observa-se uma tendência de substituição das impressões convencionais e dos modelos de gesso por imagens obtidas a partir do escaneamento intraoral para confecção de próteses parciais e/ou totais. Porém, tal técnica não reduz a formação do biofilme sobre os materiais utilizados, possibilitando a ocorrência de doenças fúngicas, como a estomatite protética. Assim, o objetivo deste estudo in vitro será avaliar o efeito do polimento e de tempos de imersão em soluções desinfetantes sobre as propriedades físicas (estabilidade de cor, dureza, rugosidade, energia livre de superfície e topografia superficial) e biológicas (capacidade de adesão e formação de biofilme e citotoxicidade) de resina obtida através de impressão 3D. Amostras (14 mm de diâmetro e 1,2 mm de espessura) serão projetadas virtualmente e serão confeccionadas em impressora 3D. Após a confecção, as amostras serão divididas em 2 grupos de acordo com o protocolo de polimento: CP: amostras obtidas através de impressão 3D passarão por um protocolo de polimento e serão armazenadas em água destilada por 48 horas; SP: amostras obtidas através de impressão 3D não receberão polimento e serão armazenadas em água destilada por 48 horas. As amostras dos grupos CP e SP serão subdividas em novos grupos, de acordo com as soluções desinfetantes, como a seguir: CPAD: amostras polidas imersas em água destilada; CPHS: amostras polidas imersas em hipoclorito de sódio a 0,5%; CPDC: amostras polidas imersas em digluconato de clorexidina a 2%; CPSL: amostras polidas imersas em solução de sabonete líquido desinfetante (Lifebuoy); SPAD: amostras não polidas imersas em água destilada; SPHS: amostras não polidas imersas em hipoclorito de sódio a 0,5%; SPDC: amostras não polidas imersas em digluconato de clorexidina a 2%; SPSL: amostras não polidas imersas em solução de sabonete líquido desinfetante (Lifebuoy). Todas as amostras serão imergidas nos tempos de imersão de 0, 1, 3 e 6 meses e após cada período, as propriedades físicas e biológicas das amostras serão avaliadas. Os resultados serão tabulados e submetidos ao teste de normalidade para verificar a distribuição dos dados amostrais. Com base nos resultados observados por meio do teste de normalidade, será possível determinar o método estatístico mais adequado em nível de significância de 5%. (AU)
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