| Processo: | 22/13470-4 |
| Modalidade de apoio: | Auxílio à Pesquisa - Regular |
| Data de Início da vigência: | 01 de março de 2024 |
| Data de Término da vigência: | 28 de fevereiro de 2026 |
| Área do conhecimento: | Engenharias - Engenharia Biomédica - Engenharia Médica |
| Pesquisador responsável: | Giovana Tofoli Moniz |
| Beneficiário: | Giovana Tofoli Moniz |
| Instituição Sede: | Centro de Pesquisas Odontológicas São Leopoldo Mandic. Faculdade São Leopoldo Mandic (SLMANDIC). Campinas , SP, Brasil |
| Município da Instituição Sede: | Campinas |
| Pesquisadores associados: | Aguinaldo Silva Garcez Segundo |
| Assunto(s): | Cicatrização Terapia a laser de baixa intensidade |
| Palavra(s)-Chave do Pesquisador: | cicatrização | cultura de celula | ensaio pré-clínico | Fotobiomodulação | Fotobiomodulação |
Resumo
A fotobiomodulação é uma estratégia eficiente para a melhora do processo de cicatrização. O processo de cicatrização é considerado complexo e envolve fatores como coagulação, inflamação, fibroplastia e deposição de colágeno. Este processo responde de maneira satisfatória a fotobiomodulação que auxilia a velocidade e qualidade de cicatrização em diversos modelos in vitro e in vivo. Porém, ainda não existe consenso sobre qual tipo de fonte de luz pode ser mais efetiva na fotobiomodulação, e, como esta terapia atua nas diversas vias envolvidas neste processo, como a via dos complexos proteicos Fator Nuclear kappa beta (NF- ºB) e o fator nuclear eritroide 2 relacionado ao fator 2 (Nrf2). Assim, o objetivo deste estudo é verificar o efeito da fotobiomodulação em todas as fases do processo de cicatrização (inflamação, angiogênese e reparo) e qual a participação dos complexos proteicos NFºB e do Nrf2 nestes processos com a aplicação de fotobiomodulação. O estudo será iniciado por um screnning in vitro com fontes de luz emitindo em diversos comprimentos de onda (vermelho, azul, violeta e verde) em diferentes parâmetros de irradiação (comprimento de onda, energia e dose) em cultura de células por ensaios de MTT e de migração celular de fibroblastos e queratinócitos humanos. Após esta etapa, serão selecionados os melhores parâmetros de aplicação para cada fonte de luz e estes serão aplicados em ratos Wistar em feridas excisionais no dorso dos animais, uma cranial e outra caudal. Os animais serão divididos em quatros grupos (n=12) conforme o descrito a seguir: grupo controle (sem tratamento, na lesão caudal do mesmo animal), grupos fonte de luz -vermelha, verde, violeta e azul. Quatro animais por grupo serão eutanasiados após 3, 7 e 14 dias dos tratamentos. Serão coletadas amostras da ferida para analise histológica com HE e imunohistoquimica (VEGF e colágeno tipo 1). Além de avaliação de citocinas por ELISA (TNF-±, IL-6, IL-10 e IL-1²) e expressão gênica por RT-PCR de NFº², Nrf2 e TGF-². (AU)
| Matéria(s) publicada(s) na Agência FAPESP sobre o auxílio: |
| Mais itensMenos itens |
| TITULO |
| Matéria(s) publicada(s) em Outras Mídias ( ): |
| Mais itensMenos itens |
| VEICULO: TITULO (DATA) |
| VEICULO: TITULO (DATA) |